제주 넙치(Paralichthys olivaceus) 양식 산업은 우리나라 해수어류 생산량의 약 50% 이상을 차지하는 중요한 산업이며, 최근에 양식 어류의 바이러스성 질병감염에 대한 보고가 점차 증가하고 있어 양식 산업 생산성에 큰 피해를 주고 있다. 우리나라 양식넙치에 질병을 일으키는 대표적인 주요 바이러스는 red seabream iridovirus (RSIV), lymphocystis disease virus (LCDV)와 같은 DNA 바이러스와 viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV), viral nervous necrosis virus (VNNV), hirame rhabdovirus (HRV), marine birnavirus (MABV) 등과 같은 RNA 바이러스 질병들이 보고되고 있으며, 그 중 수산생물질병관리법에서 정하는 전염병으로 방역조치 대상 질병인 VHSV 및 RSIV는 최근 우리나라 양식넙치에 빈번히 발생하여 바이러스성 질병에 대한 관심이 증가하고 있다(Cho et al., 2010).

VHSV 감염은 담수산 연어과 어류인 무지개송어(Oncorhynchus mykiss)에서 가장 광범위하게 퍼져 있는 전염성이 강한 질병으로 알려져 왔으나, 이후에 담수 및 해수로 사육중인 다른 연어과 어류나 다양한 어종에 감염되는 사례가 보고되고 있다(Mortensen et al., 1999). 우리나라의 경우 2000년대부터 동해안 지역의 넙치에서 처음 발병된 이후 수온이 낮아지는 겨울과 봄에 걸쳐 대량 폐사를 일으켜 양식 산업에 큰 경제적 손실을 유발하는 것으로 밝혀지면서(Takano et al., 2000; Isshiki et al., 2001) 세계동물보건기구(World Organization for Animal Health, OIE)의 수산동물질병관리법에서 정하는 관리대상전염병으로 지정되어 질병 발생 저하 및 방역을 위한 노력이 확대 요구되고 있다. 또한 VHSV는 Rhabdoviridae과 Novirhabdovirus속에 포함되며 단일 가닥의 RNA를 가진 6개의 gene들은 nucleocapsid protein (N), phosphoprotein (P), matrix protein (M), glycoprotein (G), non-structural protein (NV) 및 RNA polymerase (L)의 순으로 구성된다(Schutze et al., 1999). Snow et al. (1999)과 Lumsden et al. (2007)은 VHSV의 N과 G 유전자 염기서열의 계통분류학적 분석을 토대로 크게 4가지 genotype으로 구분하고, 이들 유전형은 지리적 위치에 따라 Genogroup I (European freshwater and sea fish), Genogroup II (British Isles), Genogroup III (North Atalantic and North America), Genogroup IV (Pacific coast, Atlantic, Great Lakes, Japan and Korea)의 4가지의 유전형이 일반화되어 있다(EinerJensen et al., 2004; Dale et al., 2009; Kim et al., 2011).

RSIV의 경우 1990년 일본의 참돔(Pagrus major) 양식장에서 처음 발견되었으나, 최근에 한국, 중국, 동남아시아 지역에서 많은 피해가 보고되고 있다(Inouye et al., 1992; Matsuoka et al., 1996). 우리나라에서의 RSIV에 대한 감염은 1990년대 남해안 지역의 돌돔(Oplegnathus fasciatus)에서 처음 보고된 후, 다른 어종인 참돔이나 넙치 등과 같은 해수어에서도 발생하여 국내 양식 산업에서 비교적 잦은 빈도로 관찰된다(Do et al., 2005). 또한 RSIV의 질병 원인 바이러스는 Megalocytivirus에 속하며, 현재 계통분석에 의해 4개의 subgroups로 구분하여, subgroup I 은 RSIV, subgroup II 는 국내의 매년 돌돔 등에 심각한 폐사를 일으키는 RBIV, subgroup III은 중국의 쏘가리(Siniperca scherzeri)에서 분리된 ISKNV가 대표적이며, subgroup IV는 넙치(P. olivaceus)와 turbot(Scophthalmus maximus)으로부터 분리된 TRBIV로 알려져 있다(He et al., 2001; Do et al., 2004; Shi et al., 2004).

본 연구에서는 수산생물전염병의 방역조치 대상 질병인 VHS 및 RSIVD에 대한 질병발생 예방과 확산을 방지하기 위해 제주지역의 넙치양식장을 대상으로 바이러스성 질병 모니터링을 실시하여 질병예방 및 전파 방지 등 방역지도의 기초자료로 활용하고자 한다.

실험에 사용된 실험어는 제주도(제주시/서귀포시)에 위치하는 넙치 양식장으로부터 2015년 3월(60개소), 5월(55개소), 7월(52개소)에 넙치(Paralichthys olivaceus)를 수집하였고, VHSV 및 RSIV에 의한 질병감염 실태를 조사하였다.

RSIV의 검사를 위하여 방류수산생물 전염병검사 실시요령(국립수산과학원 예규 제 84호) 중 RSIVD 정밀검사법에 따라 primer set를 제작하여 PCR 방법에 사용하였다(Table 1). VHSV에 대한 Primers는 지역 특이적인 계통분류학적 분석을 위해 N-gene의 444 bp forward primer (5’-GAGAGAACTGGCCCTGACTG-3’)와 reverse primer (5’-ATGATCCGTCTGGCTGACTC-3’)를 Cho et al. (2007)의 방법에 따라 제작하였고, G-gene의 1,340 bp forward primer (5’-ACAGATCACTCAACGACCTC-3’)와 reverse primer (5’-ATAGTGACGGCCAAAGA CTC-3’)는 full length open reading frames (ORFs)의 서열을 토대로 본 연구실에서 제작하여 PCR 방법에 사용하였다(Table 1)

RSIV 감염 진단을 위하여, DNeasy^Ⓡ Blood & Tissue Kit (Qiagen Hilden, Germany)를 사용하여 넙치의 비장 조직으로부터 total DNA를 분리하였다. 먼저 각 조직의 10 mg에 ATL buffer 180 μL와 proteinase K 20 μL를 첨가하여 56℃에서 조직이 녹을 때까지 반응시켰다. 반응 후, AL buffer 200 μL를 넣어 섞은 다음 ethanol 200 μL를 더하여 spin column에 옮겨 6,000 g 에서 1분간 원심분리하였다. Column을 새로운 tube로 옮긴 후 AW1 buffer 500 μL와 AW2 buffer 500 μL를 이용하여 세척과정을 거친 후, AE buffer 50 μL를 첨가하여 최종적으로 DNA를 분리하였다. 분리된 DNA는 실험 전까지 −20℃에 보관하였다.

VHS에 대한 감염 진단을 위하여, 넙치의 신장을 적출하여 시중에 판매되고 있는 Viral RNA Mini kit (Qiagen Hilden, Germany)를 이용해 RNA를 분리하였다. 먼저 각 신장 조직의 10 mg에 nuclease freewater 140 μL를 첨가하여 homogenizer로 마쇄하였다. 균질화 된 샘플은 AVL buffer 560 μL를 넣고 15초간 섞은 다음 실온에 10분간 반응 후, ethanol 560 μL를 더하여 spin column에 옮겨 6,000 g에서 1분간 원심분리하였다. Column을 새로운 tube로 옮긴 후 AW1 buffer 500 μL와 AW2 buffer 500 μL를 이용하여 세척과정을 거친 후, AE buffer 30 μL를 첨가하여 최종적으로 RNA를 분리하였다. 분리된 RNA는 실험 전까지 −20℃에 보관하였다. RT-PCR은 3 μL의 viral RNA, 4 μL의 5×reaction buffer, 1 μL의 reverse transcriptase, 1 μL의 dNTP, 1 μL의 oligo (dT) primer 및 2.4 μL MgCl₂ 넣고 최종 volume이 20 μL가 되도록 nuclease freewater 첨가한 후, 25℃에서 5분, 42℃에서 1시간, 70℃ 15분간 반응시켜 합성하였다.

PCR은 microtube에 1 μM의 각 primer, 2.5 mM의 각 dNTP, 10×G-Taq Buffer, 2.5 U G-Taq DNA polymerase (Gene Pro Themal Cycler Cosmo, Korea) 및 template DNA로서 추출된 핵산을 첨가한 후 distilled water로 PCR 혼합물의 최종 volume이 20 μL가 되도록 하였고, PCR의 조건은 Table 1에 나타내었다. PCR 후 증폭 산물은 1×TAE buffer (40 Mm Tris-acetate, 1 mM EDTA)를 전기영동을 위한 완충액으로 하여, 0.5 μg/μL ethidium bromide가 첨가된 1% agarose gel상에서 전기영동한 후, UV 검출기에서 결과를 관찰하였다. PCR 증폭 산물은 Gel purification kit (Bioneer, Korea)를 이용해 정제하여, ToPo TA cloning^® kit (Invitrogen, USA)로 cloning하였고, 염기서열 분석을 의뢰하였다 (Solgent, Korea).

염기서열 계통분석은 BioEdit program의 Clustal W (Thompson et al., 1994)를 사용하여 GenBank에 등록된 N gene의 34개의 분리주(Table 2) 및 G gene의 19개의 분리주(Table 3)와 함께 alignment 하였다. Alignment된 유전자들은 MEGA program version 4.0 (Tamura et al., 2007)의 neighbor joining criteria를 수행하여 염기서열간의 유전적 거리와 계통 분석을 실시하였다.

우리나라 넙치 양식 산업의 주요 거점인 제주 지역은 1980년대부터 시작하여 제주 경제의 기간산업으로 성장하였으나, 최근에 고밀도 양식으로 인한 난치성 바이러스성 질병의 피해가 확산되고 있어 경제적 손실을 비롯한 많은 어려움을 겪고 있지만, 아직 질병발생의 사전예방 및 치료에 대한 역학조사 및 연구는 제한적이므로 질병에 대한 예방 및 방역관리의 필요성이 증가하고 있다.

이에 본 연구에서는 우리나라 넙치양식의 선두주자인 제주지역을 대상으로 수산생물전 염병의 방역조치 대상 질병인 VHS 및 RSIVD에 대한 바이러스성 질병 모니터링을 실시하여, 병원체의 감염현황 및 검출된 바이러스의 계통분류학적 분석을 실시하여 질병예방 및 방역지도를 위한 기초자료로 활용하고자 하였다.

전체 조사시료 중에서 검사 대상으로 선정한 2종의 바이러스가 검출된 시료는 총 2군데의 양식장에서 바이러스가 검출되었고, 검출율은 3.3%로 낮게 나타났다. 어류 바이러스가 검출된 개체 중에서 이들 바이러스가 차지하는 비중을 조사해본 결과, VHSV가 3월 2군데(3.3%)의 양식장에서 확인되었으며(Fig. 1, Table 4), 검출된 각 양식장의 30마리 넙치에 대한 검출률은 6.7%인 것으로 나타났다. 그 중 넙치의 크기가 15 cm 이하인 치어에서 발병하는 것을 확인할 수 있었으며, 이는 VHSV로 인해 넙치의 치어기에 많은 피해가 발생한다는 Kim et al. (2009)의 보고와 유사한 결과로 나타났다.

VHSV가 검출된 3월의 평균수온은 15℃ 이하였으며, 수온이 10-15℃ 이하의 저수온 환경에서 주로 피해가 확산되는 것으로 보고한 내용과 일치하였다(Kim et al., 2003). 또한 수온이 낮아지는 봄에 발병하는 것으로 보아 어류의 스트레스에 의해 면역력 저하현상을 보여 질병발생에 큰 영향을 미치는 것으로 생각된다.

국내 양식넙치의 RSIV에 대한 감염증은 연근해지역에서 서식하는 자연산 어류와 양식 넙치에서 검출이 되었으나(Cho et al., 2009), 최근 넙치에서의 RSIV에 대한 연구는 전무한 실정이다. 본 연구의 RSIV의 감염검사 결과, 조사기간 동안 RSIV가 검출되지 않았고(Table 4), 전형적인 RSIV 감염 증상인 체색흑화, 몸 표면의 출혈, 비장과 신장의 비대가 육안적으로 관찰되지 않았다(data not shown). 이러한 결과는 Park et al. (2015)의 연구와 동일한 결과를 나타냈으며, 제주지역에서의 RSIV는 연간 3회의 모니터링을 실시한 결과 모두 검출되지 않은 것으로 보아 질병에 대한 예방 및 대처에 대한 관리가 양호하다는 것으로 판단되며, 특정 질병에 대한 청정화 지역을 위한 지역화 및 구획화의 조건을 충분히 충족시킬 수 있을 것으로 사료된다.

최근 Kim (2015)은 two-step RT-PCR 방법을 사용하여 VHSV IVa를 검출한 바 있으며, 본 연구에서는 VHSV의 N gene (444 bp) 및 G gene (1,340 bp) primer set를 각각 사용한 RT-PCR 방법을 통해 검출하였다. 검출된 2개의 분리주는 15-E03 (SW)과 15-E03 (SD)로 표기하였고, N gene과 G gene 모두 검출되었으나 N gene에 비하여 G gene의 primer set를 사용하였을 때 검출 감도가 좋은 것을 확인하였다(Fig. 1). 검출된 2개의 VHSV 분리주는 GenBank에 등록된 34개의 분리주 N gene과 19개의 분리주 G gene의 염기서열을 기초로 비교 분석하였다.

N gene을 사용한 계통분류학적 분석 결과, 2개의 분리주 모두 genotype IV인 것으로 조사되었다(Fig. 2). VHSV genotype IV는 북미지역과 일본에서 분리되는 분리주가 포함된 IVa와 IVb subgroups로 구분되며, 2개의 분리주는 현재까지 국내의 VHSV에 대하여 보고된 것과 마찬가지로 모두 genotype IVa에 속한 것으로 분석되었다(Snow et al., 1999; Einer-Jensen et al., 2004; Lumsden et al., 2007). 또한, 본 연구에서 동정된 2개의 분리주는 일본에서 보고된 분리주(accession number: AB179621, AB490792)와 유전적으로 유사한 것으로 확인되었고(Nishizawa et al., 2002), 일본의 분리주와 본 연구에서 동정한 2개의 분리주의 염기서열을 비교한 결과 98.9-99%의 높은 상동성이 관찰되었으며(data not shown), 북미지역에서 분리된 genotype IVb 분리주와는 구분되는 것으로 나타났다(Fig. 2).

G gene을 사용한 계통분류학적 분석결과, 2개의 분리주 모두 N gene을 사용한 계통분류학적 분석결과와 동일한 경향을 보였다(Fig. 3). 그 중, 중국에서 보고된 분리주(accession number: KC685626) 및 일본에서 보고된 분리주(accession number: AB490792, DQ401191)와 가장 가까운 것으로 확인되었으며(Fig. 3), 중국 및 일본 분리주의 염기서열들과 비교 분석한 결과, 99.4-99.6% 및 99.5-99.6%로 각각 높은 상동성이 관찰되었다(data not shown).

본 연구에서 수행된 VHS 및 RSIVD에 대한 질병 모니터링은 질병예방 및 전파 방지 등 방역지도의 기초자료로 활용될 수 있으며, 본 연구를 통하여 VHS 발생 양식장에 대해서는 소독 및 이동제한과 같은 차단방역이 실시되었다. 양식어류에 대한 청정 지역화 및 구획화를 위해서는 향후에도 지속적인 질병 모니터링과 함께 효율적인 방역조치가 이루어져야 할 것이다.