빅벨리해마(Hippocampus abdominalis)에서의 Mitochondrial Heat Shock Protein 75 유전자의 특징과 발현 분석

Characterization of Mitochondrial Heat Shock Protein 75 (mtHSP75) of the Big-belly Seahorse Hippocampus abdominalis

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  • ABSTRACT

    Mitochondrial heat shock protein 75 (mtHSP75) is a member of the HSP90 family and plays essential roles in refolding proteins of the mitochondrial matrix. Mitochondria provide energy in the form of ATP and generate reactive oxygen species (ROS). Heat shock proteins (HSPs) are activated in response to stress, and protect cells. In this study, we characterized the mtHSP75 of the big-belly seahorse Hippocampus abdominalis. The protein (BsmtHSP75) is encoded by an open reading frame (ORF) of 2,157 nucleotides, has 719 amino acids (aa), and is of molecular mass 82 kDa. BsmtHSP75 has two functional domains, a histidine kinase-like ATPase (HATPase_c) domain (123–276 aa) and an HSP90 family domain (302–718 aa). BsmtHSP75 was expressed in all tested tissues of healthy seahorses. The ovary contained the highest transcription level, followed (in order) by the blood, brain, and muscle. Pouch tissue showed the lowest expression level. The expression of BsmtHSP75 was significantly (P<0.05) up-regulated on viral or bacterial challenge, suggesting that BsmtHSP75 plays a role in the immune defense against bacterial and viral pathogens.


  • KEYWORD

    Big-belly seahorse , Mitochondrial heat shock protein 75 , HSP90 , Stress , Real-time PCR

  • 서 론

    Heat shock proteins (HSPs)는 세포 내 chaperones 또는 스트레스 단백질로 잘 알려져 있으며, 세포내에서 수송과정과 단백질 접힘, 단백질 기능 저하에 대항하여 중요한 역할에 관여한다(Lindquist and Craig, 1988; Hartl and Hayer-Hartl, 2002; Mayer and Bukau, 2005; Wang et al., 2009). 분자량에 따라 HSP100, HSP90, HSP70, HSP60, HSP40, HSP10 등으로 분류되며 모든 생물에서 공통적으로 보존되어 있다(Padmini and Geetha, 2009). 대부분의 HSPs는 생리학적 환경에서 낮은 농도로 존재하나, heat shock와 oxidative stress, hydroperoxidase stress, radioadaptive response, glucose deprivation 등에 의해 발현이 증가된다(Hadari et al., 1997; Lee, 2001; Mitsumoto et al., 2002; Jönsson and Schill, 2007).

    미토콘드리아에 존재하는 HSP75 (mtHSP75)는 TNF receptor-associated protein 1 (TRAP1)로서 HSP90 계열에 속하는 단백질이며 다른 HSP90계열 단백질과는 달리 N-말단에 미토콘드리아를 target하는 signal peptide을 가지고 있다(Matassa et al., 2012). mtHSP75는 미토콘드리아에 필요한 단백질의 수송과 단백질 가수분해를 통해 단백질 재조립하는 역할을 한다(Haynes and Ron, 2010). Heat shock이나 다른 형태의 스트레스에 노출되었을 경우, 미토콘드리아에서는 reactive oxygen species (ROS)가 과도하게 생성되는데 이렇게 생성된 ROS는 단백질 변성을 촉진시키고(Sakurai and Cederbaum, 1998; Gutterman, 2005) 세포자살(apoptosis)를 유발시킨다(Hua et al., 2007). 이때 mtHSP75는 ROS와 같은 산화적 스트레스로 인해 변성된 단백질을 회복시켜 세포자살을 방지한다(Im et al., 2007).

    HSPs는 오랫동안 지속적으로 연구를 해왔으나, 어류에서의 미토콘드리아 단백질에 속하는 HSPs에 관한 많은 연구가 되지 않았다. 최근 경골어류인 나일틸라피아(Oreochromis niloticus), 빅토리아 시클리드(Pundamilia nyererei), 시클리드 하플로크로미스 부르토니(Haplochromis burtoni) 등의 mitochondrial heat shock protein 75 유전자가 GenBank (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/)에 등록되어있으나 이 유전자의 분자적 특징이나 발현분석은 이루어지지 않았다.

    해마는 세계적으로 천식, 심장병, 골절 등에 치료하는 약제로 쓰이며, 특히 빅벨리해마(Hippocampus abdominalis)는 해마류 중에서 크기가 가장 크고 아름다운 체색과 체형을 지니고 있어 관상가치가 높아 국제 해수 관상생물 시장에서도 인기가 많다. 그러나 약용 가치로 인해 일부 국가에서 남획하고 있으며 더욱이 지구온난화와 연안의 환경오염 등으로 서식할 수 있는 환경이 축소되면서 자연개체의 수는 점차 감소하고 있다(Hilton-Taylor and Mittermeier, 2000). 호주와 그 주변국, 중국과 한국에서 인공수정을 통한 양식이 되고 있으나, 그 수가 수요에 비해 현저히 부족하다(Forteath, 1997; Woods, 2000a, b). 북해마(Hippocampus kuda Bleeker), 갈귀해마(Hippocampus guttulatus), Short-snouted seahorse (Hippocampus hippocampus) 등에서 면역반응과 생리적 연구가 진행되고 있으나 빅벨리 해마의 면역•생리학적 연구가 아직 미비하다.

    이에 본 연구에서는 빅벨리해마으로부터 mitochondrial heat shock protein 75 (BsmtHSP75)유전자의 분자유전학적 특징과 조직별 발현 양상을 분석하고 동정하였으며 해마에 병원체 및 면역자극제를 사용하여 유전자의 변화를 관찰하였다.

    재료 및 방법

      >  실험동물 및 공격실험

    제주에 위치한 한국해수관상어종묘센터(CCORA, http://www.ccora.com/)에서 약 20 cm 크기의 빅벨리해마를 구입하여 수온 18±0.2℃, 염분 32±1 psu의 순환수조에서 일주일동안 순치시켰으며, 각 수조당 35마리씩 사육하였다. 대조군을 제외한 각 실험군에 lipopolysaccharide (1.25 μg/μL), Poly I:C(1.5 μg/μL), Streptococcus iniae (1×105 CFU/μL), Edwardsiella tarda (5×103 CFU/μL)를 100 μL씩 접종하였고 샘플 채집은 시간별(0, 3, 6, 12, 24, 48, 72 h)로 각각 5마리의 해마에서 blood와 kidney을 채취하여 −80℃에 보관하였다.

      >  BsmtHSP75 유전자 클로닝과 분자적 특징 분석

    건강한 해마의 blood와 liver, kidney, gill, spleen에서 추출한 RNA를 이용하여 합성된 cDNA 염기서열은 454 GS-FLXTM system (Roche 454 Life Sciences, USA)로 분석하여 cDNA library database를 구축하였다. BLAST (http://www.ncbi. nlm.nih.gov/BLAST)를 이용하여 빅벨리해마 mtHSP75 유전자의 cDNA 전체 서열을 확인하였으며, BLAST Search program을 사용하여 BsmtHSP75의 상동유전자를 비교하였다. ClustalW2 program을 이용하여 Multiple sequence alignment를 수행하였으며, 비교 분석한 다른 종은 Maylandia zebra (XP_004559424.1), Haplochromisburtoni (XP_005944046.1), Oreochromis niloticus (XP_003450104.1), Oryzias latipes (XP_004071480.1), Takifugu rubripes (XP_003964711.1), Xenopus (Silurana) tropicalis (XP_002932506.1), Gallus gallus (NP_001006175.1), Microtus ochrogaster (XP_005349296.1), Homo sapiens (NP_057376.2) 이다. Pairwise sequence alignment (http://www.ebi.ac.uk/Tools/psa/emboss_needle/)를 이용하여 다른 종 mtHSP75와의 동일성(identity)과 유사성(similarity)을 비교분석하였고, BsmtHSP75의 단백질 도메인은 SMART program (http://smart.embl-heidelberg.de/)을 통해 분석하였다. 계통발생학적 분석은 다른 종의 mitochondrial HSP75와 아미노산 서열을 비교분석하였으며, MEGA 5.5 program을 이용하여 the neighbor-joining (NJ) 방법으로 계통수를 나타내었다.

      >  Total RNA 추출과 cDNA 합성

    Total RNA 추출을 위해 건강한 빅벨리해마의 14개 조직 (Blood, brain, gill, heart, intestine, liver, kidney, muscle, ovary, pouch, skin, spleen, stomach, testis)과 공격실험한 빅벨리해마의 조직(blood와 kidney)을 분리하여 액체질소로 냉동시킨 후 −80℃에 보관하였다. 각 조직의 total RNA는 RNAiso plus (TaKaRa, Japan)을 사용하여 추출하였으며, PrimeScriptTM II 1st strand cDNA Synthesis kit (TaKaRa)를 사용하여 제조사의 방법에 따라 first-strand cDNA를 합성하였다.

      >  Quantitative real-time PCR을 이용한 BsmtHSP75의 발현분석

    BsmtHSP75의 cDNA 단편을 증폭하기 위해 사용된 oligonucleotide primer는 각각 mtHSP75-F (5'-TCTGGACATTGTTGCCAGGTCTCT-3')와 mtHSP75-R (5'-CGTGTCCTGTATGGTGAAGGTGTTCT-3')이다. 각 조직별 cDNA는 real-time PCR을 수행하기 위한 주형으로 사용되었다. Quantitative real-time PCR 분석은 2X SYBR Premix Ex Taq (TaKaRa)을 이용하여 95℃에서 30초간 1 cycle, 그리고 95℃에서 5초, 58℃에서 10초, 72℃에서 20초를 45 cycles, 그리고 95℃에서 15초, 60℃에서 30초, 95℃에서 15초간 1 cycle로 반응하였고, Thermal cycler DICE Real Time System (TP800; TaKaRa, Tokyo, Japan)을 사용하여 분석하였다. BsmtHSP75의 발현 결과는 Livak (2−ΔΔCT) 방법(Livak and Schmittgen, 2001)을 통해 나타내었으며 빅벨리해마의 40S ribosomal protein S7 (F: 5'-GCGGGAAGCATGTGGTCTTCATT-3', R: 5'-ACTCCTGGGTCGCTTCTGCTTATT-3')을 reference gene으로 사용하였고, 모든 데이터는 40S ribosomal protein S7 (Accession No. KP780177)에 대해 상대적으로 나타내었다.

      >  통계학적 분석

    실험결과는 mean±표준편차(S.D.)로 나타냈으며 PASW Statistics 18 (SPSS Inc.) program을 이용하여 일원배치 분산분석을 실시하였다. 유의수준은 Duncan’s Multiple Range test를 통해 P<0.05에서 판단하였다.

    결과 및 고찰

    본 연구에서는 빅벨리해마의 mitochondrial heat shock protein 75 (BsmtHSP75)를 추출하여 cDNA를 확인하고 분자유전학적 특징과 발현 양상을 분석하였다. BsmtHSP75 cDNA(KJ756322)의 open reading frame (ORF)는 2,157 bp로 719개의 아미노산을 암호화하며 분자량은 82 kDa으로 추정되었다(Fig. 1).

    mtHSP75은 다른 HSP90 계열의 단백질과는 달리 N-말단에는 미토콘드리아를 인식하는 mitochondrial signal peptide와 ATPase domain을 가지며, C-말단에는 HSP90 dimer 형성도메인을 포함하는 HSP90 domain으로 구성되어 있다(Buchner, 1999; Sreedhar et al., 2004; Wegele et al., 2004). 이와 마찬가지로 in silico analysis을 통해 BsmtHSP75의 N-말단에는 17개의 아미노산으로 이루어진 signal peptide (1-17 aa)가 존재하였으며, ATP binding site (또는 chemical binding site)를 가지는 histidine kinase-like ATPase (HATPase_c) domain (123-276 aa)이 확인되었고, C-말단 부분에는 HSP90 domain (302-718 aa)이 위치하였다(Fig. 1). HATPase_c domain에는 1개의 Mg2+ ion binding site (N134)와 ATP binding pocket에서 top과 bottom에 위치하는 2개의 GXG motif (G175VG177, G217VG219)를 포함하고 있었다(Fig. 2) (Obermann et al., 1998). Pairwise sequence alignment 결과, BsmtHSP75는 O. niloticus mtHSP75와 P. nyererei mtHSP75에서 각각 88.1%, 87.9%의 동일성과 93.3%, 93.1%의 유사성을 확인하였다(Table 1). Multiple sequence analysis를 통해 다른 종과의 유사성과 공통적으로 보존된 도메인을 확인하였으며(Fig. 2), 계통발생학적 분석에서 BsmtHSP75는 다른 경골어류 mtHSP75와 같은 cluster안에 속하고 있음을 확인하였다(Fig. 3).

    mtHSP75는 모든 세포에 기본적으로 존재하고 있으며 이는 BsmtHSP75 유전자의 조직별 발현 분석에서도 잘 나타나고 있다. BsmtHSP75 유전자는 모든 조직에서 발현하고 있으며 다른 조직에 비해 ovary, blood, brain 순으로 높은 발현을 보이고 있었다. 척추동물인 돼지와 토끼의 HSP90유전자는 생식기관에서 가장 높게 발현하였으며, 무척추동물인 새우에서도 생식기관에서 가장 높게 발현되었다(Quraishi and Brown, 1995; Huang et al., 1999; Li et al., 2012). 이는 HSP90이 생식기관의 발달과 성숙에 관여하기 때문으로 보이며(Wu and Chu, 2008), 따라서 ovary에서 HSP90계열인 BsmtHSP75가 생식기관의 발달과 성숙에 관여하는 것으로 생각된다. 이 뿐만 아니라, 포유류의 mtHSP75는 혈액에서 보편적으로 존재하고 있는 단백질로 보고되어 있다(Stamova et al., 2009). 포유류의 뇌에서도 mtHSP75가 발현되는데 그것은 열충격과는 관계없이 평상시에도 mtHSP75가 발현되어 있어 뇌의 뉴런 기능에 관여하는 것으로 보인다(Quraishi and Brown, 1995). 이는 빅벨리 해마의 혈액과 뇌에서 mtHSP75 유전자가 보편적으로 발현하고 있으며 뇌에서는 뉴런 기능에 관여하는 것으로 사료된다.

    병원체 감염 시 일어나는 면역반응을 조사하기 위해 조직별 분석 결과를 토대로 하여 대표적인 면역기관인 blood와 kidney에서 LPS, Poly I:C, 병원균을 접종한 실험동물의 mtHSP75 mRNA 발현을 분석하였다. 그 결과, blood에서는 Poly I:C 접종 후 12, 72 h에서, E. tarda 접종 후 24, 48 h에서 발현이 유의적으로 증가하는 양상이 보이며(Fig. 5A), kidney에서는 LPS는 3, 6, 12, 24, 48 h에서, Poly I:C는 12, 48, 72 h에서 유의적으로 발현이 증가하였다(Fig. 5B).

    바이러스와 세균 감염에 의한 ROS 발생은 단백질을 변성시키고 세포자살을 야기한다(Feuer et al., 2003; Saraste et al., 2003; Donati et al., 1991). 이러한 ROS의 발생은 mtHSP75를 발현을 유도한다고 보고되어 있으며(Jönsson and Schill, 2007), mtHSP75는 손상된 단백질과 결합하여 원래의 구조로 회복시킨다(Gao et al., 2008). 결국 mtHSP75는 바이러스와 세균의 감염에 의해 유발된 세포자살을 억제함으로써 바이러스와 세균로부터 세포를 보호한다(Wang et al., 2009). 이 연구에서는 바이러스 유사물질인 Poly I:C를 사용하여 접종하였고 blood와 kidney 두 조직에서 BsmtHSP75의 발현이 유의적인 경향을 보였다. 또한 E. tarda에 대해 blood에서 BsmtHSP75가 유의적으로 증가하는 양상을 나타내었으며, 이는 ROS 발생으로 인한 세포자살 메카니즘에 의한 것으로 보인다.

    LPS는 그람 음성균의 외막에 존재하는 내독소로서 어류에 LPS자극 시 면역 반응을 일으킨다(Magnadóttir, 2006). Kidney에서 LPS자극 시 BsmtHSP75가 3 h부터 유의적으로 증가하다가 48 h에서 감소하는 경향을 나타내고 있으며, 이는 kidney에서 LPS자극에 의한 면역 반응에 mtHSP75가 관여하는 것으로 사료된다. 그러나 송어에서 LPS자극 시 단핵구/대식세포에서 발현이 억제된다고 보고되어 있으며(MacKenzie et al., 2006), 빅벨리해마의 blood에서 LPS자극에 의해 BsmtHSP75의 발현이 억제된 것으로 생각되어진다.

    LPS처럼 직접적으로 세포의 면역 반응에 영향을 끼치는 것과는 달리 세균의 경우, 면역 반응을 회피하기 위한 여러 메카니즘을 가지고 있으며(Finlay and McFadden, 2006), blood와 kidney에서 세균 감염시 유의적인 경향을 보이지 않았던 것은 세균의 면역회피 가능성으로 보여진다.

    결론적으로, 빅벨리해마(H. abdominalis)의 mtHSP75 유전자는 외부로부터 침입한 바이러스과 세균 등의 병원체에 대항하여 항바이러스성 및 항균성을 가지고 있는 것으로 생각되어진다. 이러한 해마의 면역자극물질과 병원체 감염에 의한 mtHSP75 유전자 분석을 어류의 면역학적 연구나 해마의 또 다른 유전자 분석연구에 있어서 기초적인 연구자료로 사용될 것으로 사료된다.

  • 1. Buchner J 1999 Hsp90 & Co.-a holding for folding [Trends Biochem Sci] Vol.24 P.136-141 google doi
  • 2. Donati Y, Kantengwa S, Polla B 1991 Phagocytosis and heat shock response in human monocytes-macrophages [Pathobiology] Vol.59 P.156-161 google doi
  • 3. Feuer R, Mena I, Pagarigan RR, Harkins S, Hassett DE, Whitton JL 2003 Coxsackievirus B3 and the neonatal CNS: the roles of stem cells, developing neurons, and apoptosis in infection, viral dissemination, and disease [Am J Pathol] Vol.163 P.1379-1393 google doi
  • 4. Finlay BB, McFadden G 2006 Anti-immunology: evasion of the host immune system by bacterial and viral pathogens [Cell] Vol.1244 P.767-782 google doi
  • 5. Forteath G 1997 The large bellied seahorse, Hippocampus abdominalis [Austasia Aquaculture] Vol.11 P.52-53 google
  • 6. Gao Q, Zhao J, Song L, Qiu L, Yu Y, Zhang H, Ni D 2008 Molecular cloning, characterization and expression of heat shock protein 90 gene in the haemocytes of bay scallop Argopecten irradians [Fish Shellfish Immunol] Vol.24 P.379-385 google doi
  • 7. Gutterman DD 2005 Mitochondria and reactive oxygen species an evolution in function [Circ Res] Vol.97 P.302-304 google doi
  • 8. Hadari YR, Haring HU, Zick Y 1997 p75, a member of the heat shock protein family, undergoes tyrosine phosphorylation in response to oxidative stress [J Biol Chem] Vol.272 P.657-662 google doi
  • 9. Hartl FU, Hayer-Hartl M 2002 Molecular chaperones in the cytosol: from nascent chain to folded protein [Science] Vol.295 P.1852-1858 google doi
  • 10. Haynes CM, Ron D 2010 The mitochondrial UPR-protecting organelle protein homeostasis [J Cell Sci] Vol.123 P.3849-3855 google doi
  • 11. Hilton-Taylor C, Mittermeier RA 2000 2000 IUCN red list of threatened species google
  • 12. Hua G, Zhang Q, Fan Z. 2007 Heat shock protein 75 (TRAP1) antagonizes reactive oxygen species generation and protects cells from granzyme M-mediated apoptosis [J Biol Chem] Vol.282 P.20553-20560 google doi
  • 13. Huang HC, Lee WC, Lin JH, Huang HW, Jian SC, Mao SJ, Yang PC, Huang TY, Liu YC 1999 Molecular cloning and characterization of porcine cDNA encoding a 90-kDa heat shock protein and its expression following hyperthermia [Gene] Vol.226 P.307-315 google doi
  • 14. Im CN, Lee JS, Zheng Y, Seo JS 2007 Iron chelation study in a normal human hepatocyte cell line suggests that tumor necrosis factor receptor-associated protein 1 (TRAP1) regulates production of reactive oxygen species [J Cell Biochem] Vol.100 P.474-486 google doi
  • 15. Jonsson KI, Schill RO 2007 Induction of Hsp70 by desiccation, ionising radiation and heat-shock in the eutardigrade Richtersius coronifer [Comp Biochem Physiol B-Biochem Mol Biol] Vol.146 P.456-460 google doi
  • 16. Lee AS 2001 The glucose-regulated proteins: stress induction and clinical applications [Trends Biochem Sci] Vol.26 P.504-510 google doi
  • 17. Li J, Han J, Chen P, Chang Z, He Y, Liu P, Wang Q, Li J 2012 Cloning of a heat shock protein 90 (HSP90) gene and expression analysis in the ridgetail white prawn Exopalaemon carinicauda [Fish Shellfish Immunol] Vol.32 P.1191-1197 google doi
  • 18. Lindquist S, Craig E 1988 The heat-shock proteins [Annu Rev Genet] Vol.22 P.631-677 google doi
  • 19. Livak KJ, Schmittgen TD 2001 Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2? ΔΔCT method [Methods] Vol.25 P.402-408 google doi
  • 20. MacKenzie S, Iliev D, Liarte C, Koskinen H, Planas JV, Goetz FW, Tort L 2006 Transcriptional analysis of LPS-stimulated activation of trout (Oncorhynchus mykiss) monocyte/macrophage cells in primary culture treated with cortisol [Mol Immunol] Vol.43 P.1340-1348 google doi
  • 21. Magnadottir B 2006 Innate immunity of fish (overview) [Fish Shellfish Immunol] Vol.20 P.137-151 google doi
  • 22. Matassa DS, Amoroso MR, Maddalena F, Landriscina M, Esposito F 2012 New insights into TRAP1 pathway [Am J Cancer Res] Vol.2 P.235-248 google
  • 23. Mayer M, Bukau B 2005 Hsp70 chaperones: cellular functions and molecular mechanism [CMLS Cell Mol Life Sci] Vol.62 P.670-684 google doi
  • 24. Mitsumoto A, Takeuchi A, Okawa K, Nakagawa Y 2002 A subset of newly synthesized polypeptides in mitochondria from human endothelial cells exposed to hydroperoxide stress [Free Radic Biol Med] Vol.32 P.22-37 google doi
  • 25. Obermann WM, Sondermann H, Russo AA, Pavletich NP, Hartl FU 1998 In vivo function of Hsp90 is dependent on ATP binding and ATP hydrolysis [J Cell Biol] Vol.143 P.901-910 google doi
  • 26. Padmini E, Geetha BV 2009 Modulation of ASK1 expression during overexpression of Trx and HSP70 in stressed fish liver mitochondria [Cell Stress Chaperones] Vol.14 P.459-467 google doi
  • 27. Quraishi H, Brown IR 1995 Expression of heat shock protein 90 (hsp90) in neural and nonneural tissues of the control and hyperthermic rabbit [Exp Cell Res] Vol.219 P.358-363 google doi
  • 28. Sakurai K, Cederbaum AI 1998 Oxidative stress and cytotoxicity induced by ferric-nitrilotriacetate in HepG2 cells that express cytochrome P450 2E1 [Mol Pharmacol] Vol.54 P.1024-1035 google
  • 29. Saraste A, Arola A, Vuorinen T, Kyto V, Kallajoki M, Pulkki K, Voipio-Pulkki LM, Hyypia T 2003 Cardiomyocyte apoptosis in experimental coxsackievirus B3 myocarditis [Cardiovasc Pathol] Vol.12 P.255-262 google doi
  • 30. Sreedhar AS, Kalmar E, Csermely P, Shen Y-F 2004 Hsp90 isoforms: functions, expression and clinical importance [FEBS letters] Vol.562 P.11-15 google doi
  • 31. Stamova BS, Apperson M, Walker WL, Tian Y, Xu H, Adamczy P, Sharp FR 2009 Identification and validation of suitable endogenous reference genes for gene expression studies in human peripheral blood [BMC Med Genomics] Vol.2 P.49 google doi
  • 32. Wang Z, Wu Z, Jian J, Lu Y 2009 Cloning and expression of heat shock protein 70 gene in the haemocytes of pearl oyster (Pinctada fucata, Gould 1850) responding to bacterial challenge [Fish Shellfish Immunol] Vol.26 P.639-645 google doi
  • 33. Wegele H, Muller L, Buchner J 2004 Hsp70 and Hsp90-a relay team for protein folding. Reviews of physiology, biochemistry and pharmacology P.1-44 google
  • 34. Woods CM 2000 Improving initial survival in cultured seahorses, Hippocampus abdominalis Leeson, 1827 (Teleostei:Syngnathidae) [Aquaculture] Vol.190 P.377-388 google doi
  • 35. Woods CM 2000 Preliminary observations on breeding andrearing the seahorse Hippocampus abdominalis (Teleostei:Syngnathidae) in captivity [N Z J Mar Freshw Res] Vol.34 P.475-485 google doi
  • 36. Wu LT, Chu KH 2008 Characterization of heat shock protein 90 in the shrimp Metapenaeus ensis: evidence for its role in the regulation of vitellogenin synthesis [Mol Reprod Dev] Vol.75 P.952-959 google doi
  • [Fig. 1.] Nucleotide and deduced amino acid sequence of big-belly seahorse Hippocampus abdoninalis mitochondrial HSP75. The start codon (ATG) and the stop codon (TGA) are shown by underling with bold letters. The signal peptide is indicated in box. The HATPase_c domain is shaded in gray. The HSP90 domain is underlined.
    Nucleotide and deduced amino acid sequence of big-belly seahorse Hippocampus abdoninalis mitochondrial HSP75. The start codon (ATG) and the stop codon (TGA) are shown by underling with bold letters. The signal peptide is indicated in box. The HATPase_c domain is shaded in gray. The HSP90 domain is underlined.
  • [Fig. 2.] Multiple sequence alignment of vertebrate mitochondrial heat shock protein 75. Sequence alignments were obtained by the ClustalW method. Conserved residues are indicated *. Two GXG motifs are indicated by boxes. M2+ ion binding site is shaded in gray.
    Multiple sequence alignment of vertebrate mitochondrial heat shock protein 75. Sequence alignments were obtained by the ClustalW method. Conserved residues are indicated *. Two GXG motifs are indicated by boxes. M2+ ion binding site is shaded in gray.
  • [Table 1.] Percent identities and similarities of BsmtHSP75 with other mtHSP75 counterparts
    Percent identities and similarities of BsmtHSP75 with other mtHSP75 counterparts
  • [Fig. 3.] Phylogenetic analysis based on ClustalW alignment of deduced amino acid sequences of various mitochondrial heat shock protein 75. Big-belly seahorse Hippocampus abdoninalis mtHSP75(KJ756322) indicated by ◆ and bold. The tree was constructed by MEGA software version 5.05 using neighbor-joining methods.
    Phylogenetic analysis based on ClustalW alignment of deduced amino acid sequences of various mitochondrial heat shock protein 75. Big-belly seahorse Hippocampus abdoninalis mtHSP75(KJ756322) indicated by ◆ and bold. The tree was constructed by MEGA software version 5.05 using neighbor-joining methods.
  • [Fig. 4.] Tissue specific expression analysis of BsmtHSP75 mRNA determined by qPCR. Error bars represent the SD (n=3). The data are indicated as the mean relative ratio of BsmtHSP75/40S ribosome mRNA levels.
    Tissue specific expression analysis of BsmtHSP75 mRNA determined by qPCR. Error bars represent the SD (n=3). The data are indicated as the mean relative ratio of BsmtHSP75/40S ribosome mRNA levels.
  • [Fig. 5.] The expression level of BsmtHSP75 mRNA in blood (A) and kidney (B) after viral and bacterial challenges. Seahorse Hippocampus abdominalis were challenged with LPS, Poly (I:C), Edwardsiella tarda, and Streptococcus iniae. BsmtHSP75 mRNA expression were determined by quantitative real time PCR at various times post challenges. Vertical bars represent the mean±S.D. (n=3) and significant differences are indicated with * letters at P<0.05.
    The expression level of BsmtHSP75 mRNA in blood (A) and kidney (B) after viral and bacterial challenges. Seahorse Hippocampus abdominalis were challenged with LPS, Poly (I:C), Edwardsiella tarda, and Streptococcus iniae. BsmtHSP75 mRNA expression were determined by quantitative real time PCR at various times post challenges. Vertical bars represent the mean±S.D. (n=3) and significant differences are indicated with * letters at P<0.05.